图书介绍
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- 沃兴德主编 著
- 出版社： 杭州：浙江科学技术出版社
- ISBN：9787534135149
- 出版时间：2009
- 标注页数：447页
- 文件大小：42MB
- 文件页数：456页
- 主题词：生物学－实验－高等学校－教材
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图书目录
第一章 植物学实验1
实验一 植物细胞内贮藏物质的观察和鉴定1
实验二 细胞壁的观察及成分鉴定3
实验三 植物的成熟组织6
实验四 茎的形态与结构12
实验五 叶的形态与结构18
实验六 花的形态与结构23
实验七 胚的发育与种子的形成26
实验八 植物界的基本类群29
实验九 被子植物分类主要形态学基础知识32
实验十 植物分类（一）藻类、菌类植物37
实验十一 植物分类（二）地衣、苔藓植物38
实验十二 植物分类（三）蕨类植物39
实验十三 植物分类（四）裸子植物——松科40
实验十四 植物分类（五）马兜铃科、蓼科、毛茛科、木兰科41
实验十五 植物分类（六）蔷薇科、豆科、十字花科、樟科43
实验十六 植物分类（七）五加科、伞形科、马鞭草科、唇形科45
实验十七 植物分类（八）玄参科、桔梗科、葫芦科、菊科47
实验十八 植物分类（九）百合科、鸢尾科、兰科49
第二章 生物化学实验50
实验一 紫外吸收法测定蛋白质含量50
实验二 双缩脲法（Biuret法）测定蛋白质含量53
实验三 Folin-酚试剂法（Lowry法）测定蛋白质含量55
实验四 考马斯亮蓝染色法（Bradford法）测定蛋白质含量57
实验五 2,4-二硝基苯肼法测定总维生素C含量59
实验六 茚三酮显色法测定总氨基酸含量61
实验七 序列超速离心分离血浆脂蛋白63
实验八 血清脂类硅胶G薄层层析66
实验九 凝胶层析法纯化低密度脂蛋白（LDL）69
实验十 血清γ-球蛋白的分离纯化74
实验十一 亲和层析法分离纯化载脂蛋白E77
实验十二 血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳80
实验十三 血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳定量测定82
实验十四 SDS-PAGE凝胶电泳法测定蛋白质的相对分子量85
实验十五 等电聚焦电泳法测定蛋白质的等电点93
实验十六 大鼠肝脏蛋白质的双向电泳分析98
实验十七 酶作用的高度专一性102
实验十八 酶活力的影响因素105
实验十九 血清碱性磷酸酶米氏常数和酶活性的测定109
实验二十 琼脂糖电泳法测定乳酸脱氢酶同工酶113
实验二十一 赖氏法测定血清丙氨酸氨基转移酶116
实验二十二 血糖影响因素与血糖测定119
实验二十三 血清总胆固醇测定121
实验二十四 血浆载脂蛋白A-I(apoA-I)的分离纯化123
实验二十五 血浆载脂蛋白B-100(apoB-100)的分离纯化129
第三章 微生物学实验131
实验一 培养基的配制131
实验二 消毒与灭菌136
实验三 微生物的分离培养143
实验四 显微镜的使用149
实验五 标本制备及染色158
实验六 细菌培养特征的观察163
实验七 放线菌、霉菌、酵母的形态观察166
实验八 从自然环境中分离噬菌体170
实验九 病毒、噬菌体172
实验十 担子菌的弹射分离法176
实验十一 微生物在自然界的分布178
实验十二 微生物数量的测定182
实验十三 微生物的生理生化反应188
实验十四 环境因素对微生物生长发育的影响195
实验十五 微生物遗传与变异199
实验十六 酵母细胞的固定化技术204
实验十七 微生物菌种保藏206
第四章 免疫学实验211
实验一 可溶性蛋白多克隆抗体的制备211
实验二 直接凝集试验——ABO血型鉴定214
实验三 单向免疫扩散试验216
实验四 双向免疫扩散试验218
实验五 对流免疫电泳220
实验六 免疫浊度测定——IgG、IgM、IgA透射比浊测定222
实验七 补体溶血试验224
实验八 酶标记免疫技术——ELISA检测乙肝表面抗原226
实验九 放射免疫技术230
实验十 斑点免疫层析技术——“一步金法”早早孕检测232
实验十一 外周血淋巴细胞分离法234
实验十二 E玫瑰花环试验236
实验十三 酶免疫组化技术——T细胞表面CD3分子的检测238
实验十四 淋巴细胞转化试验240
实验十五 抗体生成细胞检测——溶血空斑试验243
实验十六 小白鼠巨噬细胞功能测定246
实验十七 流式细胞检测技术——人外周血Th1/Th2细胞亚群检测248
实验十八 酶免疫印迹技术253
实验十九 单克隆抗体制备技术256
第五章 遗传学实验260
实验一 有丝分裂260
实验二 减数分裂263
实验三 果蝇主要性状观察和雌雄的鉴别266
实验四 果蝇培养268
实验五 果蝇单因子试验270
实验六 果蝇二对因子杂交试验272
实验七 果蝇的伴性遗传274
实验八 果蝇的三点测交试验276
实验九 果蝇唾腺染色体的制作与观察279
实验十 粗糙链孢霉的分离和交换281
实验十一 植物多倍体的诱发和观察284
实验十二 植物有性杂交285
实验十三 人体外周血淋巴细胞培养及染色体标本制备287
实验十四 小鼠骨髓细胞染色体的标本制备290
实验十五 贴壁培养细胞的染色体标本制备292
实验十六 正常人非显带染色体的核型分析294
实验十七 X染色质的标本制备297
实验十八 微核检测技术299
第六章 细胞生物学实验301
实验一 细胞的形态结构301
实验二 细胞运动302
实验三 胞质环流303
实验四 细胞吞噬304
实验五 细胞凝聚反应305
实验六 死活细胞鉴别306
实验七 细胞膜的渗透性308
实验八 大鼠肝线粒体的分离310
实验九 动物细胞微丝束的光学显微镜观察312
实验十 细胞骨架成分的荧光观察315
实验十一 酸性磷酸酶的显示方法319
实验十二 联会复合体的染色与观察321
实验十三 细胞的冻存技术323
实验十四 动物细胞培养325
实验十五 三尖杉酯碱诱导HL-60细胞程序性死亡330
实验十六 利用脂质体对293细胞转染重组GFP332
实验十七 细胞融合334
实验十八 爪蟾卵母细胞的显微注射336
实验十九 MTA法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活率的影响338
第七章 分子生物学实验340
实验一 DNA琼脂糖凝胶电泳340
实验二 质粒的提取及纯化——小量法提取（碱性裂解法）344
实验三 PCR扩增347
实验四 紫外吸收检测核酸的浓度与纯度350
实验五 大肠杆菌感受态细胞的制备及转化351
实验六 限制性内切酶的酶切354
实验七 凝胶电泳法分离、纯化DNA357
实验八 重组载体的构建与转化360
实验九 重组载体的鉴定363
实验十 外源基因在大肠杆菌中的诱导表达366
实验十一 哺乳动物组织基因组DNA的提取368
实验十二 真核细胞总RNA的提取371
实验十三 植物基因组DNA提取374
实验十四 核酸探针的PCR标记376
实验十五 Southern杂交379
实验十六 RT-PCR383
实验十七 荧光定量PCR技术386
实验十八 RAPD技术389
附录392
附录一 实验常识392
附录二 生物绘图的要求和方法396
附录三 植物学基本实验技术397
附录四 常用试剂的配制404
附录五 分子生物学实验中的常用数据及换算关系434
附录六 与分子生物学相关的实验资料438
附录七 实验记录、实验报告及论文写作444